Coleta: ORIENTAÇÃO DE COLETA:
- Mínimo de 04 horas de jejum;
- Anotar os medicamentos em uso;
- Obter sangue por punção venosa e evitar garroteamento por mais de 01 minuto, hemólise, formação de bolhas e aspiração de líquido tissular. A agulha deve penetrar diretamente na veia na primeira tentativa (punção NÃO traumática). O sangue deve fluir livremente sem que seja necessário aplicar demasiada força ao êmbolo. Não realizar o teste em amostra cuja punção for difícil (punção traumática);
- Preferencialmente coleta a vácuo (agulha com calibre 19 a 22);
- Coletar a amostra com seringa de plástico e centrifugar em tubos plásticos. O uso de material de vidro não siliconizado pode alterar falsamente os resultados. Após remover a agulha, utilizar a porção central da amostra na seringa, usando as porções anterior e posterior para outros testes;
- No caso de sistema de coleta a vácuo, usar tubo de plástico ou vidro siliconizado (menor lesão, menos contaminação e evita formação de coágulos in vitro);
- Ao realizar coleta para testes da coagulação para execução remota (outro laboratório - apoio), o tubo de citrato deve ser o SEGUNDO na ordem de coleta dos tubos. Pode ser após o frasco de hemocultura ou do tubo de descarte sem aditivo, na falta destes coletar um tubo de citrato para descarte.
Obs: Não colher antes do citrato, ou utilizar como descarte tubos sem anticoagulante contendo ativadores de coágulos. É muito importante que o tubo de citrato seja coletado antes do tubo de EDTA. Se houver apenas exames de coagulação, o primeiro tubo deve ser descartado.
- A proporção sangue/anticoagulante deve ser exatamente de 9:1 (9 partes de sangue para 1 de anticoagulante - citrato 3,2% tamponado);
- Homogeneizar a amostra por inversão suave de 5 a 8 vezes (a falha na homogeneização adequada do sangue em tubos com anticoagulante precipita a formação de microcoágulos).
PROCESSAMENTO DA AMOSTRA:
- A amostra deve ser centrifugada imediatamente após coleta por 15 minutos a 3000 rpm;
- SEPARAR o plasma com cuidado para não misturá-lo com o sedimento.
- Deixando sempre uma parte da amostra para não pipetar o sedimento (plaquetas/leucócitos);
- Repetir esse processo de centrifugação e transferir novamente o sobrenadante para outro tubo de transporte (esse procedimento deve ser realizado para obtenção de um plasma pobre em plaquetas inferior a 10000/mm³);
- Volume mínimo para ser encaminhado é de 2,0 mL;
- Congelar o plasma imediatamente após a centrifugação;
- Manter a amostra congelada durante o armazenamento e transporte;
- As amostras deverão chegar ao local do destino ainda congeladas, sendo mantidas assim até o momento da análise. As amostras não podem ser recongeladas, interferindo diretamente nos fatores de coagulação, levando a resultados incorretos.
- Amostras que apresentam fibrina e ou coágulos NÃO são adequadas para o envio. Uma nova amostra será solicitada.
INTERFERENTES:
Antibióticos, anticoagulante orais, heparina, epinefrina, contraceptivos orais, estreptoquinase.
Código SUS: 0202020240
Código CBHPM: 5.03.00.49-0
Interpretação
A determinação da concentração plasmática do FVWAg é essencial para o diagnóstico da DVW e visa distinguir entre defeitos qualitativos e quantitativos.
Indicações: Diagnóstico da DVW
Interpretação clínica: DVW tipo 1: FVW:Ag pode estar leve ou moderadamente reduzido; subtipos 2A, 2B e 2M: levemente reduzido; 2N: estar normal; tipo 3: indetectável ou muito baixo.
Sugestão de leitura complementar:
Budde, U., E. Drewke, et al. (2002). Laboratory diagnosis of congenital von Willebrand
disease. Semin Thromb Hemost 28(2): 173-90.
Federici, A. B., G. Castaman, et al. (2002). Guidelines for the diagnosis and
management of von Willebrand disease in Italy. Haemophilia 8(5): 607-21.
Referência
50% a 160%
Recem-nascidos a termo normais e prematuros
sadios tem valores do antigeno do Fator de von
Willebrand semelhantes aos dos adultos.
Última alteração realizada em 21/11/2016 17:18:00